Resistance phenotypes of Gram positive cocci in pediatric blood cultures
DOI:
https://doi.org/10.56294/hl2024.559Keywords:
multidrug resistance, blood culturesAbstract
Infections in pediatric ages constituye one of the biggest challenges today due to bacterial etiology related to high multidrug resistance. This research aimed to determine the resistance phenotypes in Gram positive cocci isolated in blood cultures from patients hospitalized at the Pepe Portilla Pediatric Teaching Hospital in Pinar del Rio from January, to June 2021. An observational, descriptive and cross-sectional study was carried out with a universe consisting of 433 patients of pediatric ages, of which only 44 blood cultures (10, 16 %) were positive for Gram positive cocci. All variables were processed through a descriptive analysis where the number (nº) and percentage (%) were determined through the SPSS package. It was found that Staphylococcus epidermidis showed the highest percentage (77.3%) followed by Staphylococcus aureus (16, 9 %), Enterococcus spp (4, 5 %) and Streptococcus pneumoniae (2,3 %). Resistance to penicillins, macrolides and clindamycin represent the largest percentage of phenotypes resistant to Gram positive cocci isolated in blood cultures of patients hospitalized in closed hospitalization services
References
1. Medina, D.A., Machado, M.E y Machado., J.E. 2015. Resistencia a antibióticos, una crisis global. Rev. Méd. Risaralda. 21 (1): 74
2. Worley H. 2003. La resistencia a los antimicrobianos pone en riesgo el avance médico. Population reference bureau [citado 15 Feb 2013]. Disponible en: http://www.prb.org/SpanishContent/Articles/2006/LaResistenciaalosAntimicrobianosPoneenRiesgoelAvanceMedico.aspx
3. González Lorenzo A. 2003. Resistencia antimicrobiana "in vitro". Sistema Diramic 10. Un año de experiencia. Rev Méd Electrón [Internet]. [citado 12 Feb 2013];25(6). Disponible en: http://www.revmatanzas.sld.cu/revista%20medica/ano%202003/vol6%202003/tema05.htm
4. Durich, J. O. 2000. Resistencia bacteriana a los antibióticos. Med. Integr., vol. 36, pp. 367–370
5. European Agency for the Evaluation of Medicinal Products Veterinary Medicines Evaluation Unit. 1999. Antibiotic Resistance in the European Union Associated with Therapeutic Use of Veterinary Medicines. Rep. Qual. Risk Assess. by Comm. Vet. Med. Prod., no. July, p. 34.
6. Organización Mundial de la Salud (OMS). 2000. Resistencia a los antimicrobianos: una amenaza mundial. Bol. Medicam. Escenciales, vol. 28–29, pp. 1–36.
7. Bravo Laura y Jiménez, V. 2018. Resistencia antibiótica en Pseudomonas aeruginosa: situación epidemiológica en España y alternativas de tratamiento. Trabajo fin de grado. Facultad de Farmacia. Universidad Complutense. 23 p
8. Organización Mundial de la Salud (OMS). 2017. Centro de prensa. Resistencia a los antibióticos. [Online consultado 26 abril 2021]. Disponible: http://www.who.int/mediacentre/factsheets/antibiotic-resistance/es/.
9. Herrera, M., Vargas, A., Moya Tatiana., Marín, J.P., Campos Marlen y Herrera, J. F. 2003. Hemocultivos en el Hospital Nacional de Niños Experiencia de 9 años 1995 – 2003. Rev. méd. Hosp. Nac. Niños (Costa Rica) vol.38 n.1-2
10. Guzmán, A., Sánchez, T., De la Barra, R. 2012. Análisis de la monitorización de cinco indicadores de calidad del hemocultivo en un hospital universitario en Chile 2009-2011. Rev Chilena Infectol. 29:406-411
11. Pardinas, M.J., Alarcón, A., Ramírez, C., Rodríguez, F y Díaz, E. 2017. Probabilidad de éxito de obtener un hemocultivo positivo. Med Int Méx. 33 (1): 28-40
12. Bearman GM, Wenzel RP. 2005. Bacteremias: a leading cause of death. Arch Med Res; 36: 646–59
13. Lara Magdalena. 2016. Identificación rápida de cocos Gram positivos en cadena en hemocultivos mediante técnicas de aglutinación de látex Rev Esp Quimioter 26 (1): 76-77
14. Özenci V, Tegmark-Wisell K, Lundberg C, Wretlind B. 2007. Rapid culture and identification: a practical method for early preliminary laboratory diagnosis of sepsis. Eur J Clin Microbiol Infect Dis.14:174-89
15. Barreales A, Lara M, Hernández I, Díez O. 2011. Rapid identification and susceptibility testing of Gram-positive cocci in BacT/ALERT blood cultures by direct inoculation into the Vitek 2 system. Rev Esp Quimioter; 24:131-5
16. Blanco, M., Scandizzo, E y González Y. 2011. Frecuencia de aislamientos microbiológicos en hemocultivos. RC HC. 10: 8-13
17. González, M.L., Martínez Magaly., López, N., Montesino Maipú., Pérez, Y e Martínez, H. 2016. Resistencia microbiana de microorganismos aislados en neonatología: Hospital "Abel Santamaría Cuadrado" 2015. Revista de Ciencias médicas de Pinar del Rio. 20 (5)
18. Ballesté López I, González Ballesté M, Campo González A, Amador Morán R, Pérez Hernández B, Díaz Valdés YN. Resistencia de Staphylococcus aureus frente a cefalosporinas en la sepsis neonatal y puerperal. Rev Cuba Obstetr Ginecol [Internet]. 2019 [citado 8 Jun 2021];, 45(1):[aprox. 0 p.]. Disponible en: http://revginecobstetricia.sld.cu/index.php/gin/article/view/416
19. Ortega L. María. 2010. Enterococos: actualización. Revista Habanera de Ciencias Médicas 2010:9(4) 507-515
20. González, M.M.L., López, N.M., Montesino, L.M, Pérez, P.Y y Martínez, S.H. 2016. Resistencia microbiana de microorganismos aislados en neonatología: Hospital. Rev Ciencias Médicas. 20 (5): 593-602.
21. Virú Yamilet. 2019. Caracterización microbiológica de bacterias aisladas de catéter venoso de pacientes hospitalizados en el Hospital Nacional Docente Madre Niño San Bartolomé de noviembre del 2017 a diciembre del 2018. Tesis en opción al Título Profesional de Licenciada en Tecnología Médica en el área de Laboratorio Clínico y Anatomía Patológica. Universidad Nacional Mayor de San Marcos. 83 p
22. Lona, J.C., Verdugo, M.A., Pérez, R.O., Pérez, J.J y Ascencio, E.P. 2015. Etiología y patrones de resistencia antimicrobiana en sepsis neonatal temprana y tardía, en una Unidad de Terapia Intensiva Neonatal. Arch. Argent. Pediatr. [Online]. Vol.113 (4) [citado 2016-03-16], pp. 317-323. Disponible en: http://www.scielo.org.ar/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0325-00752015000400007&lng=es&nrm=iso
23. Santisteban Yesleisy., Carmona, Y., Pérez, Y., Díaz Lilian., García Sandra y Kobayashi, N. 2014. Infecciones por los géneros Klebsiella y Acinetobacter en hospitales pediátricos cubanos y resistencia antibiótica. Rev cubana Med Trop [revista en la Internet]. Dic [citado 2015 jun 17]; 66(3): 400-414. Disponible en: http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0375-07602014000300008&lng=es
24. Begué Nuris., Goide, E., Frías, N., Domínguez, D., Leyva, R. 2015. Caracterización clínico epidemiológica de las infecciones asociadas a la atención sanitaria en niños y adolescentes. MEDISAN [revista en la Internet]. Ene [citado 2015 Oct 29]; 19(1): 4-9. Disponible en: http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1029-30192015000100002&lng=es
25. Koneman. Diagnóstico microbiológico. 2012
26. Macfaddin JF. Pruebas bioquímicas para la identificación de bacterias de importancia clínica. 3ª. ed. t-1. La Habana: Ciencias Médicas; 2006.p. 344-61.
27. Ardanuy Carmen., Cercenado Emilia., Morosini María Isabel y Torres Carmen. Detección fenotípica de mecanismos de resistencia en grampositivos. Recomendaciones de la Sociedad Española de Enfermedades Infecciosas y Microbiología Clínica. 2011.Procedimientos en Microbiología Clínica
28. Siberry GK, Tekle T, Caroll D, Dick J. Failure of clindamycin treatment of methicillin-resistant Staphylococcus aureus expressing inducible clindamycin resistance in vitro. Clin Infect Dis. 2003; 37:1257-1260.
29. Beltrán Marcelo A, García Del Corro Horacio J, Couso Mónica, Gallo María D, Lettieri Antonio, Barna Patricia V. Relación entre hacinamiento e infecciones comunitarias de piel y partes blandas. Medicina (B. Aires) [Internet]. 2017 dic [citado 2021 Nov 12]; 77(6): 465-468. Disponible en: http://www.scielo.org.ar/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0025-76802017000600003&lng=es
30. Duquesne Alderete Amilcar, Castro Sánchez Niria, Monzote López Alexis, Paredes Cuervo Issax. Caracterización de aislamientos de Staphylococcus aureus comunitarios en muestras purulentas. Rev cubana Med Gen Integr [Internet]. 2015 Sep [citado 2021 Nov 21]; 31(3). Disponible en: http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0864-21252015000300004&lng=es.
31. González Martínez Miguel Luis, López Novo Magaly, Montesino López Maipú, Pérez Plana Yerandy, Martínez Sánchez Heraldo. Resistencia microbiana de microorganismos aislados en neonatología: Hospital "Abel Santamaría Cuadrado" 2015. Rev Ciencias Médicas [Internet]. 2016 oct [citado 2019 Nov 21]; 20(5): 64-75. Disponible en: http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1561-31942016000500009&lng=es.
32. Ocampo-Palacio Alejandro, Castrillón-Spitia Juan Daniel, Rivera-Echeverry Clara Inés, Londoño-Montes Juliana, Martínez-Betancur Sofía, Machado-Alba Jorge Enrique. Prescripción de antibióticos en infecciones de piel y tejidos blandos en una institución de primer nivel. CES Med. [Internet]. 2018 Apr [cited 2018 Nov 21] ; 32( 1 ): 3-13. URL. Disponible en: http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0120-87052018000100003&lng=en. http://dx.doi.org/10.21615/cesmedicina.32.1.
33. GONG, Zongrong et al. Portación nasal de Staphylococcus aureus y sus perfiles de resistencia a antibióticos en niños que viven en zonas de gran altitud del sudoeste de China. Arch. argent. pediatr. [online]. 2017, vol.115, n.3 [citado 2021-10-23], pp.274-276. Disponible en: <http://www.scielo.org.ar/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0325-00752017000300011&lng=es&nrm=iso>. ISSN 0325-0075. http://dx.doi.org/10.5546/aap.2017.274.
34. Mensa J, et al. 2013. Guía de tratamiento antimicrobiano de la infección por Staphylococcus aureus. Review Espanish Quimioterapy 26 (Suppl. 1):1-84.) y (Abarca, G. y Herrera, M.L. 2001. Betalatamasas: su importancia en la clínica y su detección en el laboratorio. Review Medical Hospital 36(1-2):77-104)
35. Perfomance Standards for Antimicrobial susceptibility testing; fourteenth Informational Suplements, M100-S15.2005.NCCLS, Wayne (PA). USA. [en línea]. 2004 Jun [citado 2018 Dic 18];24. URL. Disponible en:http://scholar.google.com.cu/scholar?q=+Performance+Standards+for+Antimicrobial+Susceptibility+Testing.&btnG=&hl=es&as_sdt=0%2C5
36. Rice LB. 2006. Antimicrobial resistance in gram-positive bacteria. doi: 10.1016/j.ajic.2006.05.220
37. Rybak MJ. 2006. Pharmacodynamics: Relation to antimicrobial resistance. Am J Infect Control. 34: S38-45.
38. Espinosa, C., Cortés, J., Castillo, J y Leal, A.L. 2011. Revisión sistemática de la resistencia antimicrobiana en cocos Gram positivos intrahospitalarios en Colombia. Biomédica. 31: 27-34
39. Briceño Indira, Suárez Manuel E. 2006. Resistencia Bacteriana en la Unidad de Cuidados Intensivos del Hospital Universitario de Los Andes. Medicrit 2006 [Citado 2021 Oct 12]; 3(2) Disponible en: http://www.medicrit.com/Revista/v3n2.06/30030206.pdf
40. Roberts JA, Roberts MS, Semark A, Udy A, Kirkpatrick C, Paterson D. 2011. Antibioticdosing in the `at risk' critically ill patient: Linking pathophysiology with pharmacokinetics/pharmacodynamics in sepsis and trauma patients. BMC Anesthesiology. 2011 [citado 12 Oct 2021]; 11(3). Disponible en: http://bmcanesthesiol.biomedcentral.com/articles/10.1186/1471-2253-11-3
41. Paz-Montes, A., Fuenmayor, Alisbeth., Sandrea, L., Piña-Reyes, E., López-Dávila, M y Navarro, P. 2015. Incidencia de microorganismos en hemocultivos procesados en un hospital del estado Zulia y su resistencia a los agentes antimicrobianos. Kasmera. 43 (1): 16 – 33.
42. Trujillo Rodríguez Yordanka,I Fernández Alfonso Jana M., González Lorenzo Ariadna, López García Idalmis, Delgado Pérez Lenia. Resistencia microbiana de gérmenes aislados en pacientes de las unidades de cuidados intensivos e intermedios. Hospital Universitario Clínico Quirúrgico Comandante Faustino Pérez. 2010. Rev Med Electrón 2012 [Citado 2021 oct 18]; 34(5). Disponible en: http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1684-18242012000500001
43. Morosini, M. Isabel., Cercenadob Emilia., Ardanuyc Carmen y Torresd Carmen. 2012. Detección fenotípica de mecanismos de resistencia en microorganismos grampositivos
44. Liu H, Buescher G, Lewis N, Snyder S, Jungkind D. Detection of borderline oxacillin-resistant Staphylococcus aureus and differentiation from methicillinresistant strains. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 1990. 9:717–24.
45. Tamariz-Ortiz JH, Cruz-Quintanilla J, Atencia-Porras A, Figueroa-Tataje J, Horna-uintana G, Guerra-Allison H. Resistencia a clindamicina inducida por eritromicina en Staphylococcus aureus aislados de tres hospitales de Lima, Perú. Acta Médica Peruana 2009; 26: 12-16.
46. Clinical and Laboratory Standards Institute. Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing; Twenty-Fifth Informational Supplement. CLSI document M100-S25. Pensilvania, Estados Unidos: Clinical and Laboratory Standards Institute; 2015.
47. Morales GI, Yaneth MC, Chávez KM. Caracterización de la resistencia in vitro a diferentes antimicrobianos en cepas de Staphylococcus spp. en una institución hospitalaria de la ciudad de Valledupar entre enero y julio de 2009. Rev Cienc Salud 2012; 10: 169-177
48. Castellano González MJ, Perozo-Mena AJ. Mecanismos de resistencia a antibióticos ƒÀ-lactamicos en Staphylococcus aureus. Kasmera [serie en Internet]. 2010 Jun [citado 01 agosto 2021]; 38(1): [aprox 12 páginas]. Disponible en: http://www.scielo.org.ve/ scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0075- 52222010000100003&lng=es
49. Sandrea-Toledo LB, Piña-Reyes EJ, Paz-Montes A, Torres-Urdaneta EL. Determinación de la resistencia a meticilina meticilina y eritromicina de cepas de Staphylococcus aureus aisladas en un hospital del estado Zulia. Rev Soc Ven Microbiol 2012; 32: 88-94
50. Ramírez-Salinas Y, Zayas-Illas A, Collado-Yero R, Cabrera-Nuñez MV, Zayas-Martínez GI, Cuza-Turcáz C. Detección de resistencia inducible a clindamicina de Staphylococcus aureus resistente a meticilina. Havana, Cuba: 8th Cuban Congress on Microbiology and Parasitology, 5th National Congress on Tropical Medicine and 5th International Symposium on HIV/aids infection in Cuba. 14 al 16 de octubre de 2014.
51. Leclerq R. Mechanisms of resistance to macrolides and lincosamides: nature of the resistance elements and their clinical implications. Clin Infect Dis. 2002. 34:482–92.
52. Chow JW. Aminoglycoside resistance in enterococci. Clin Infect Dis.2000;31:586–9
53. Tubau, F., Liñares Josefina y Martin, R. 2000. Resistencia antibiótica en Streptococcus pneumoniae. http://192.168.100.2/control/reviBacte/pnepp.htm. 1-6
54. Ezelarab HAA, Abbas SH, Hassan HA, Abuo-Rahma GE-DA. Recent updates of fluoroquinolones as antibacterial agents. Arch Pharm (Weinheim) [Internet]. 1 de septiembre de 2018. 351 (9): 1800141. Disponible en: https://doi.org/10.1002/ardp.201800141 DOI: 10.1002/ardp.201800141 PMID 30048015 Google Académico Microsoft Académico
55. Álvarez-Hernández DA, Garza-Mayén GS, Vázquez-López R. Quinolonas: Perspectivas actuales y mecanismos de resistencia. Rev Chil Infectología [Internet]. 2015;32(5):499-504. Disponible en: https://scielo.conicyt.cl/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0 716-10182015000600002&lng=en&nrm=iso&tlng=en DOI: 10.4067/S0716-10182015000600002 PMID 26633105 SciELO Lilacs Google Académico Microsoft Académico
56. Redgrave LS, Sutton SB, Webber MA, Piddock LJ V. Fluoroquinolone resistance: mechanisms, impact on bacteria, and role in evolutionary success. Trends Microbiol [Internet]. 1 de agosto de 2014; 22 (8): 438-45. Disponible en: https://doi.org/10.1016/j.tim.2014.04.007 DOI: 10.1016/j.tim.2014.04.007 PMID 24842194 Google Académico Microsoft Académico
57. Sanabria G. Correlación de serotipos, sensibilidad y resistencia antimicrobiana en niños con infecciones invasivas por Streptococcuspneumoniae en un centro de referencia de Asunción-Paraguay. Revisión de 6 años. Rev. Inst. Med. Trop 2009;4: 14-24.
58. Noda Albelo, AL; Vidal Tallet, LA; Vidal Casal, JI y Hernandez Alvarez L. Utilización de la penicilina en la infección extrameníngea por Streptococcus pneumoniae. Rev Cubana Pediatr 2011; 83:405-12.
59. Manual de Laboratorio para la Identificación y Prueba de Susceptibilidad a los Antimicrobianos de Patógenos Bacterianos de Importancia para la Salud Pública en el Mundo en Desarrollo. WHO 2003. WHO/CDS/CSR/RMD/2003.6. Atlanta, Georgia: Centros para el Control y la Prevención de Enfermedades; Switzerland: Organización Mundial de la Salud, 2004
60. Weyland BS, Losada M, Molelrach M, Bonofiglio L, De Mier C, Garcia SA, Vay C, Rodriguez CH, Famiglietti A. Evaluación de la actividad de diferentes antimicrobianos frente a Streptococcus pneumoniae provenientes de pacientes adultos con neumonía adquirida en la comunidad. Revista Americana de medicina respiratoria 2011; 11:117-24.
61. Bantar C, Curcio D, Jasovich A, Bagnulo H, Arango A, Bavestrello L. Neumonía aguda adquirida en la comunidad en adultos: Actualización de los lineamientos para el tratamiento antimicrobiano inicial basada en la evidencia local del Grupo de Trabajo de Sudamérica (ConsenSur II). Rev. Chil. Infectol 2010; 27: 9-38.
62. Del Castillo Martín F. Neumococo resistente a la penicilina. Un grave problema de salud pública. An Esp Pediatr 1996; 45:233-35.
Published
Issue
Section
License
Copyright (c) 2024 Noel Suarez Reyes, Miguel Luis González Martínez, Kirenia Apaulaza Corrales, Diana Lobo Riverol, Leidy Liana López Ramos (Author)
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
The article is distributed under the Creative Commons Attribution 4.0 License. Unless otherwise stated, associated published material is distributed under the same licence.
