doi: 10.56294/hl2023228

ORIGINAL

Pharmacological study and nutritional value of Amaranthus dubius Mart. leaves (Bledo)

Estudio farmacológico y valor nutricional de las hojas Amaranthus dubius Mart (Bledo)

Escobar Paredes Rebeca Lucrecia¹, Solís Monar Lissette Gabriela¹, Pilar Asunción Soledispa Cañarte¹

¹Universidad de Guayaquil, Facultad de Ciencias Químicas. Guayaquil, Ecuador.

Citar como: Escobar Paredes RL, Solís Monar LG, Soledispa Cañarte PA. Pharmacological study and nutritional value of Amaranthus dubius Mart. leaves (Bledo). Health Leadership and Quality of Life. 2023; 2:228. https://doi.org/10.56294/hl2023228

Enviado: 25-04-2023                   Revisado: 10-07-2023                   Aceptado: 10-10-2023                 Publicado: 11-10-2023

Editor: PhD. Prof. Neela Satheesh

ABSTRACT

The objective of this research is to study the pharmacognostic characteristics and to know the nutritional value of the leaf of Amaranthus dubius Mart. obtained from the Durán canton of the province of Guayaquil. Part of the analyses were carried out in the “Food Laboratory of the Faculty of Chemical Sciences” of the University of Guayaquil and the other part in the “AGRORUM Laboratory”; obtaining as a result the pharmacognostic parameters: total ashes 20 %, water soluble ashes 5,25 %, insoluble ashes in hydrochloric acid 14,3 %, humidity 8 %, soluble substances 5,2 % (Ext. aqueous), 2,2 % (Ext. ethereal), 2,80 % (Ext. alcoholic), using the Miranda and Cuellar method. Phytochemical screening was used to qualitatively determine the presence of alkaloids, quinones, flavonoids, fatty acids, reducing sugars, phenolics and/or tannins and triterpenes and/or steroids, following the Miranda and Cuellar methodology. For the determination of the nutritional value, parameters such as macronutrients (phosphorus (0,13 %), magnesium (0,20 %), nitrogen (4,71 %), potassium (1,67 %), calcium (0,16 %) and sulfur (0,09 %)), micronutrients (Iron (149,07mg/kg), Zinc (88,71mg/kg), Copper (18,69mg/kg), Manganese (147,28mg/kg), Boron (17,80mg/kg) and Sodium (84,15 mg/kg)) and fiber (16,94) by internal laboratory technique.

Keywords: Amranthus dubius; Leaves; Nutritional; Phytochemical Screening; Pharmacognostic Characteristics; Pharmacognostic Characteristics.

RESUMEN

La presente investigación tiene como objetivo estudiar las características farmacognósticas y conocer el valor nutricional de la hoja de Amaranthus dubius Mart. obtenida del cantón Durán de la provincia de Guayaquil. Una parte de los análisis se realizaron en el “Laboratorio de Alimentos de la Facultad de Ciencias Químicas” de la Universidad de Guayaquil y la otra parte en el “Laboratorio de AGRORUM”; obteniendo como resultado los parámetros farmacognósticos: cenizas totales 20 %, cenizas solubles en agua 5,25 %, cenizas insolubles en ácido clorhídrico 14,3 %, humedad 8 %, sustancias solubles 5,2 % (Ext. Acuoso), 2,2 % (Ext. Etéreo), 2,80 % (Ext. alcohólico), utilizando el método de Miranda y Cuéllar. Mediante el tamizaje fitoquímico se determinó cualitativamente la presencia de alcaloides, quinonas, flavonoides, ácidos grasos, azúcares reductores, fenólicos y/o taninos y triterpenos y/o esteroides, siguiendo la metodología de Miranda y Cuéllar. Para la determinación del valor de nutricional se realizó parámetros como macronutrientes (fósforo (0,13 %), Magnesio (0,20 %), Nitrógeno (4,71 %), Potasio (1,67 %), Calcio (0,16 %) y Azufre (0,09 %), micronutrientes (Hierro (149,07mg/kg), Zinc (88,71mg/kg), Cobre (18,69mg/kg), Manganeso (147,28mg/kg), Boro (17,80mg/kg) y Sodio (84,15 mg/kg) y fibra (16,94) mediante técnica interna del laboratorio.

Palabras clave: Amranthus Dubius; Hojas; Nutricional; Tamizaje Fitoquímico; Características Farmacognósticos.

INTRODUCCIÓN

Dentro del género Amaranthus se estiman de 60 a 75 especies conocidas en todo el mundo, entre las cuales la mayoría de ellas provienen de América y solo 15 especies son de Europa, Asia, África y Australia, por lo cual muchas de sus características dependen del medio donde se desarrollan, dando así múltiples variaciones de especies.^(1,2,3)

El género Amaranthus se caracteriza por su alto contenido de nutrientes tanto en hojas como en las semillas, además de sus diferentes propiedades medicinales, en este caso se centra en las hojas de la Amaranthus dubius Mart. o mayor conocida como bledo o pira.^(4,5,6) Sus hojas tienen múltiples propiedades y beneficios que ayudan a combatir la diarrea, la menstruación, úlceras cutáneas, tos, fiebre, entre otras características además de esto es un gran oxigenante cerebral y un estimulante neuronal.^(7,8,9)

Entre la composición de las hojas se encuentra diferentes componentes como calcio, potasio, fósforo, magnesio, hierro, zinc, cobre, vitamina B1 o tiamina, B2 o riboflavina, B3, A y C, aminoácidos, entre otros.^(10,11,12)

Por lo tanto, se realiza la propuesta de identificar mediante tamizaje fitoquímicos los metabolitos y el valor nutricional presente en las hojas de Amaranthus dubius Mart. con la finalidad de conocer su potencial como posible alimento.

¿Qué características farmacognósticas y valor nutricional presentarán las hojas Amaranthus dubius Mart obtenido del cantón Durán?

Objetivo

Estudiar las características farmacognósticas y el valor nutricional de las hojas de Amaranthus dubius Mart. (Bledo)

MÉTODO

Tipo de investigación El presente trabajo de investigación es de tipo experimental y bibliográfico. Experimental dado que se llevó a cabo la evaluación de los extractos, donde la realización de los estudios farmacognósticos se desarrolló en el Laboratorio de alimentos de la Facultad de Ciencias Químicas de la Universidad de Guayaquil, y la determinación del valor nutricional por parte de los Laboratorios de Agrorum.

Bibliográfico ya que se consultó con información científica para ampliar los conocimientos de la especie y la metodología aplicada.

Estudio farmacognotico

Recolecccion, ,selección e identificación: Las hojas de la especie se recolectaron en el cantón Durán en el mes de noviembre del 2022.

Para la identificación de la especie “149” se llevó la planta completa al Herbario GUAY de la Facultad de Ciencias Naturales de la Universidad de Guayaquil.

Secado, molida y almacenamiento: una vez realizada la identificación, se procedió con la recolección de las hojas de la especie para luego clasificarlas y secarlas a temperatura ambiente. Después del tiempo trascurrido se pulverizó las hojas en un mortero, para luego pasarla por un tamiz y almacenarlas en un frasco de vidrio con tapa hermética y cubiertas con papel aluminio para su posterior análisis.

Macroformologia: la descripción macromorfología de las hojas de Amaranthus dubius se llevó a cabo mediante la observación y se evaluó los siguientes aspectos: tamaño, forma, color, condición y caracteres de la superficie

Parámetros fisicoquimicos

Determinación de cenizas totales: la Determinación de cenizas totales es una técnica que nos permite medir el total de materia que queda después de una calcinación, por lo cual esto incluye cenizas fisiológicas que son tejidos provenientes de la planta y las cenizas no fisiológicas que son materia extraña que se encuentra en la superficie de la especie.

Tabla 1. Materiales y equipos para la determinación de cenizas
Crisoles	Pinza
Agua destilada	Vasos de precipitación
Papel filtro	Pipetas
Desecador	Balanza digital marca SHIMADZU
Calentador u hornilla de calentamiento	Mufla marca MLW
Estufa Marca MEMMERT	Mechero

Fuente: Miranda et al.

Figura 1. Procedimiento de Cenizas Totales

Expresión de los resultados:

Ct = Porcentaje de cenizas totales en base hidratada.

M = Masa del crisol vacío (g).

M1 = Masa del crisol con la porción de ensayo (g).

M2 = Masa del crisol con la ceniza (g).

100 = Factor matemático para los cálculos.

Determinación de cenizas solubles en agua

Fuente: Miranda et al.

Figura 2. Procedimiento de Cenizas solubles en agua

Gráfico: Expresión de resultados:

Ca = Porcentaje de cenizas solubles en agua en base hidratada.

M2 = Masa del crisol con las cenizas totales (g).

Ma = Masa del crisol con las cenizas insolubles en agua (g).

M1 = Masa del crisol con la muestra de ensayo (g).

M = Masa del crisol vacío (g).

100 = Factor matemático.

Determinación de cenizas insolubles en ácido clorhídrico

Figura 3. Procedimiento de Cenizas insolubles en ácido clorhídrico

Expresión de resultados:

Cac = Porcentaje de cenizas insolubles en ácido clorhídrico en base hidratada. M1 = Masa del crisol con la porción de ensayos (g).

M = Masa del crisol vacío (g).

M2 = Masa del crisol con la ceniza (g).

100 = Factor matemático.

Determinación de humedad

La determinación de humedad se lleva a cabo mediante el método gravimétrico donde en el cual denota la pérdida de masa después de un proceso de desecado en la estufa.

Tabla 2. Materiales y equipos para la determinación de humedad
Capsulas	Pinza
Espátula	Estufa Marca MEMMERT
Desecador	Balanza digital marca SHIMADZU

Fuente: Miranda et al.

Figura 4. Procedimiento para la determinación humedad

Expresión de los resultados:

Hg = Pérdida en peso por desecación (%).

M2 = Masa de la cápsula con la muestra de ensayos (g).

M1 = Masa de la cápsula con la muestra de ensayo desecada (g).

100 = Factor matemático.

M = Masa de la cápsula vacía.

Determinación de sustancias solubles

En la determinación de sustancias solubles se utilizan solventes como éter, agua, alcohol entre otros, donde mediante una maceración se obtienen extractos de estas sustancias en donde se ocupará alícuotas de los extractos hasta su sequedad.

Figura 5. Procedimiento para la determinación de sustancias solubles

Estudio fitoquímico

Tamizaje fitoquímico

El tamizaje Fitoquímico nos ayuda a tener conocimiento de que metabolitos se encuentran presentes en las hojas de Amaranthus dubius Mart utilizando extracciones que se fueron obtenidas mediante maceraciones en diferentes solventes. El tamizaje fitoquímico se basó en la metodología propuesta por Miranda Martínez et al.

Tabla 3. Materiales y equipos para el Tamizaje Fitoquímico
Sorbona	Embudo
Agua destilada	Vasos de precipitación
Papel filtro	Pipetas
Varilla de vidrio	Frascos de vidrio
Hornilla de calentamiento	Gradilla
Tubos de ensayo	Cucharilla

Tabla 4.  Reactivos a ocupar para el tamizaje Fitoquímico
Éter etílico	Etanol
Agua destilada	Sudan III
Fehling B	Fehling A
Cloruro férrico	Cloroformo
Ácido clorhídrico conc. y al 1 %	Anhídrido acético
Hidróxido de sodio 10 % y 5 % en agua	Alcohol amílico
Ácido pícrico 1 % en etanol	Cinta de magnesio
Acetato de sodio

Preparación de la muestra

Fuente: Miranda et al.

Figura 6. Esquema de la preparación de la muestra para la obtención de los extractos

Fuente: Miranda et al.

Figura 7. Ensayos realizados con el extracto etéreo, alcohólico y acuoso

Ensayo de Sudan: permite reconocer la presencia de compuestos grasos. En un tubo de ensayo se coloca 1 ml del extracto y se le adiciona 1 ml del reactivo Sudan III o Sudan IV, se calienta en baño de agua hasta la evaporación del solvente. El resultado es positivo si aparecen gotas o una película coloreada de rojo en las paredes del tubo de ensayo.

Ensayo de Baljet: permite reconocer la presencia de compuestos con agrupamiento lactónicos, en particular coumarinas u otros compuestos lactónicos. En un tubo de ensayo se agrega 1 ml del extracto; si el extracto no es alcohólico, se debe evaporar en baño María y redisolverse en 1 ml de etanol. Luego se adiciona 1 ml del reactivo Baljet, considerándose un ensayo positivo la aparición de coloración (++) o precipitado rojo (+++).

El reactivo Baljet se prepara con Hidróxido de sodio al 10 % en agua y Ácido pícrico al 1 % en etanol, ambas soluciones se preparan de forma independiente y se mezcla en igual cantidad al momento de realizar el ensayo.

Ensayo de Dragendorff: permite reconocer la presencia de alcaloides. Si el extracto se encuentra disuelto en un solvente orgánico, se debe evaporar en baño María y el residuo redisolverse en 1 ml de ácido clorhídrico al 1 % en agua. Si el extracto es acuoso, se le agrega 1 gota de ácido clorhídrico concentrado, (calentar suavemente y dejar enfriar hasta acidez). Con la solución acuosa ácida se realiza el ensayo, añadiendo 3 gotas del reactivo de Dragendorff, si hay opalescencia se considera positiva (+), turbidez definida (++), precipitado (+++).

Ensayo de Liebermann-Burchard: permite reconocer la presencia de triterpenos y esteroides. En un tubo de ensayo se agrega 1 ml del extracto si el extracto no se encuentra en cloroformo, se debe evaporar en baño María y el residuo redisolverse en 1 ml de cloroformo. Se agrega 1 ml de anhídrido acético y se mezcla homogéneamente. Se adiciona por las paredes del tubo de 2 a 3 gotas de ácido sulfúrico concentrado sin agitar. Un ensayo positivo se puede reconocer por cambios rápido de coloraciones:

1. Rosado-azul (Muy rápido).

2. Verde intenso (Visible, aunque rápido).

3. Verde oscuro-negro (Final de la reacción).

El ensayo puede quedar en dos fases o desarrollo de color. Muy pocas veces puede observarse el primer cambio. El tercer cambio suele ocurrir cuando el material evaluado tiene cantidades importantes de estos compuestos.

Ensayo de resinas: para detectar este tipo de compuesto, en un tubo de ensayo se agrega 1 ml del extracto alcohólico y 5 ml de agua destilada. El ensayo es positivo si aparece un precipitado.

Ensayo de Fehling: permite reconocer la presencia de azúcares reductores. En un tubo de ensayo se agrega 1 ml del extracto; si el extracto no es acuoso, se debe evaporar en baño María y el residuo redisolverse en 1-2 ml de agua. Se adiciona1 ml del reactivo y se calienta en baño de agua 5-10 minutos la mezcla.

El ensayo se considera positivo si la solución se colorea de rojo o aparece precipitado rojo.

Ensayo de la espuma: permite reconocer la presencia de saponinas, tanto del tipo esteroidal como triterpénica. En tubo de ensayo se agrega 1 ml del extracto alcohólico y se diluye con 5 veces su volumen en agua y se agita la mezcla fuertemente durante 5-10 minutos. El ensayo es positivo si aparece espuma en la superficie del líquido de más de 2 mm de altura y persistente por más de 2 minutos.

Ensayo de Cloruro Férrico: permite reconocer la presencia de compuestos fenólicos y taninos. En extracto alcohólico, determina tanto fenoles como taninos y en acuoso determina taninos. En un tubo de ensayo se coloca 1 ml del extracto; si el extracto es alcohólico se agrega 3 gotas de una solución de tricloruro férrico al 5 % en solución salina fisiológica. Si el extracto es acuoso, se le añade acetato de sodio para neutralizar y 3 gotas de una solución de tricloruro férrico al 5 % en solución salina fisiológica. Un ensayo positivo puede dar la siguiente información general:

· Desarrollo de una solución rojo-vino: compuestos fenólicos en general

· Desarrollo de una solución verde intensa: taninos del tipo pirocatecólicos.

· Desarrollo de una coloración azul, taninos del tipo pirogalotánicos.

Ensayo de Borntrager: este ensayo permite identificar quinonas. Para ello si la alícuota del extracto no se encuentra en cloroformo, debe evaporarse el solvente en baño maría y el residuo redisolverse en 1 ml de cloroformo. Se adiciona 1 ml de hidróxido de sodio. Se agita mezclando las fases y se deja en reposo hasta su separación. Si la fase acuosa alcalina (superior) se colorea rosado o rojo se considera positivo. Coloración rosada (++), coloración roja (+++).

Ensayo de Shinoda: permite reconocer la presencia de flavonoides. En un tubo de ensayo se coloca 1 ml del extracto, si el extracto se encuentra en alcohol, se diluye con 1 ml de ácido clorhídrico concentrado y un pedacito de cinta de magnesio metálico. Después de la reacción se espera 5 minutos, se añade 1 ml de alcohol amílico, se mezclan las fases y se deja reposar hasta que se separen. Si el extracto es acuoso se procede de igual forma, a partir de la adición del ácido clorhídrico concentrado. El ensayo se considera positivo, cuando el alcohol amílico se colorea de amarillo, naranja, carmelita o rojo; intensos en todos los casos.

Ensayo de Antocianidinas: permite reconocer la presencia de estructuras de secuencia C6-C3-C6 del grupo de los flavonoides. En un tubo de ensayo colocar 1 ml del extracto etanólico con 0,5 ml de HCL conc., se calienta por 10 minutos, se deja enfriar y se adiciona 1 ml de agua y 2 ml de alcohol amílico.

Se agita y se deja separar las dos fases. La aparición de color rojo a marrón en la fase amílica, es indicativa de un ensayo positivo.

Ensayo de mucílagos: permite reconocer en los extractos de vegetales la presencia de esta estructura tipo polisacárido, que forma un coloide hidrófilo de alto índice de masa que aumenta la densidad del agua donde se extrae. En un tubo de ensayo se coloca 1 ml del extracto acuoso y se enfría a 0 – 5 ºC y si la solución toma una consistencia gelatinosa el ensayo es positivo.

Valor nutricional

El valor nutritivo de una planta está dado por su composición química por lo cual es muy importante conocer el contenido de nutrientes presentes. Por esta razón para conocer su valor nutricional se realizó un examen foliar básico que comprende proteínas, minerales y fibra basándose en la metodología de los métodos de la Association of Official Analitycal Chemists y metodología aplicada por los laboratorios de AGRORUM.

Análisis foliar básico

Determinación de nitrógeno total (NT)

Para la determinación de Nitrógeno Total (NT) se emplea el método Kjeldahl, donde la muestra es descompuesta en caliente en un medio ácido (ácido sulfúrico), en presencia de un agente reductor catalizador (mercurio, cobre o selenio). Luego se adiciona una sal neutra para aumentar el punto de ebullición (337 °C) de la disolución de ácido sulfúrico. De esta forma que aumenta temperatura de trabajo, con lo cual se favorece la descomposición logrando la destilación en corriente de vapor.

El frasco colector contiene un volumen medido de una disolución estándar de ácido, al finalizar la destilación se procede a valorar el ácido no consumido con una disolución de base patrón. El volumen de disolución básica consumido hasta llegar al punto de equivalencia permite conocer la cantidad de NH3, y de esta forma, la cantidad de nitrógeno en la muestra.

Determinación fósforo (P) por espectrofotometría UV- VIS

Se purga todo el material a utilizar con HCL, de tal manera se evita cualquier tipo de interferencia en la corrida de la muestra. Se prepara la muestra patrón a 50 ppm de concentración y almacena en un frasco ámbar, en donde a partir de la solución patrón preparada anteriormente se diluye a 100 ml de 10 ppm en balón volumétrico. Con la solución patrón de 10 ppm se realiza las siguientes concentraciones: 0,01, 0,05, 0,1, 0,3, 0,5, 1,0 mg del ion fosfato en los respectivos balones volumétricos 100 ml, y un duplicado de concentración 0,3, de la misma manera se elabora un blanco de 100 ml. Finalmente se agrega la muestra a un balón volumétrico 100 ml con 4 ml de molibdato de amonio a cada balón para formar fosfomolibdato de amonio. En el caso del duplicado de concentración 0,3 se adicionó 10 gotas de cloruro estañoso con glicerol, dejando reposar 11 minutos. Pasados los 11 minutos se toma la longitud de onda al duplicado en el espectrofotómetro. Con la longitud de onda obtenida se calibra el equipo con el que se va a trabajar para medir los grados de absorbancia obteniendo la curva de calibración. La primera medición que se realiza fue solo agua destilada en la celda, posteriormente se agrega 10 gotas el cloruro estañoso desde el blanco hasta la muestra por intervalos de 2 minutos. Iniciando la medición de la absorbancia pasado 10 minutos de haber agregado el cloruro estañoso. Para la medición de la absorbancia se agrega a la celda del espectrofotómetro una pequeña muestra de cada balón, realizando un lavado previo con agua destilada.

Determinación de sodio (Na), potasio (K), calcio (Ca), magnesio (Mg), Hierro (Fe), zinc (Zn), cobre (Cu), manganeso (Mn), boro (B)

Para el tratamiento de la muestra se debe pesar 1 g de la planta seca y molida, luego de esto se debe colocar en un tubo de plastico agregando 10mL de ácido nitrico concentrado (HNO3), donde el frasco reposa durante 12h, a la par de la muestra se debe preparar el blanco con la muestra de referencia. Pasado el tiempo de posa se debera calentar en el bloque de digestion de Evironmental Express a 105oC , se le debe colocar la tapa de salida de vapores hasta la produccion de humos rojos de NO2 haya cesado(en caso de que falte de digestar la muestra, se anade 2mL de HNO3 concentrado para que continue su proceso de digestion). Al finalizar se debe dejar enfriar el tubo con la digestion a temperatura ambiente y agregar una pequena cantidad de Ácido perclórico HClO4 AL 70 %. Se debe calentar nuevamente a la temperatura de 105oC dejando que se evapore hasta obtener un volumen pequeño (menor o igual a 5ml).

Se deja enfriar y se transfiere la muestra digestada a un matraz de volumen 50mL, haciendo enjuages de la tapa y frasco con agua ultrapura seguidamente con la aforacion con agua tipo reactivo. Se debe filtrar con papel filtro cuantitativo, ese filtrado se lo puede utilizar para las lecturas en el espectrofotometro de absorcion atomica. Se debe encender el espectrofotometro de absorcion atomica, dejando calentar la lampara a utilizar por lo menos 30min. El EAA con llama de aire-acetileno C2H2 y calibrado con la serie de estandares (Ca= 422,67; Mg=285,21 ; K=766,49; Na=589; Cu=324,75; Fe=248,33; Mn=279,48 y Zn=213,86).

La parte instrumental se acondiciona el EAA siguiendo los pasos del manual de uso, se prosigue con la lectura de los estandares, blanco y lote de muestras a analizar. Donde el coeficiente de correlacion para cada analito debe ser ≥0,99. El RSD de las intensida de absorbancia: la dispersion de los valores experimentales de la curva respecto al valor teorico no debe ser mayor a 15 %. Para el cálculo de la concentracion en mg/L se emplea la siguiente formula:

Conc.(mg/L)=Abs ±b/a*Fd

Donde:

Abs: absorbancia de la muestra

b: pendiente de la curva

a: intercepto

Fd: Fator de dilución

Determinación de fibra cruda

Se realiza la digestión con soluciones de ácido sulfúrico e hidróxido de sodio, posteriormente se calcina el residuo. Se pesa 1 g de muestra desengrasada y se le adiciona 100 ml de ácido sulfúrico al 1,25 %. Se calienta en la plancha de calentamiento, por 30min. Seguidamente se filtra por un papel de filtro previa- mente tarado y se le adiciona 100ml de NaOH al 1,25 % (p/v) y se coloca nuevamente en la plancha de calentamiento por 30min. Posteriormente se filtra y se lava con etanol absoluto; el papel de filtro con el residuo se lleva a secar a la estufa por 24h. Se pasa el papel a un crisol previamente tarado y se pesa para posteriormente quemar y poner en la mufla por 8h; pasado este tiempo se sacó de la mufla, se enfrió y se pesó. El porciento de fibra se determinó según la siguiente ecuación:

Donde:

W1= Peso de la muestra.

W3= peso de crisol más muestra seca.

W4= peso de crisol + ceniza.

RESULTADOS Y DISCUSIÓN

A continuación, se muestra la descripción macromorfológica de las hojas de Amaranthus dubius:

Figura 8. Macromorfología de las hojas

Parámetros fisicoquímicos

En las siguientes figuras se reflejan los resultados de los ensayos fisicoquímicos realizados a la hoja pulverizada de la planta de Amaranthus dubius.^{(13,14,15,16)} Dichos resultados fueron comparados con los valores de diferentes estudios realizados en la hoja del bledo, cabe mencionar también que hay resultados que no existen estudios realizados y se presentan por primera vez.^(17,18)

Cenizas totales

El ensayo de cenizas totales es un parámetro de calidad para indicar el porcentaje de minerales que se encuentran presente en la muestra.^(19,20) Este ensayo se realizó por duplicado y se obtuvo como resultado 20 %, comparando estos resultados con los obtenidos en el trabajo desarrollado por un estudio de la composición química del Amaranthus dubius donde indicaron el valor de 20,18 % para cenizas, se puede indicar que los porcentajes son cercanos.^(21,22,23) Sin embargo, de acuerdo a la Farmacopea china establece un porcentaje referencial al 15 % de cenizas totales para materia vegetal.^(24,25,26)

Figura 9. Porcentaje de cenizas totales

Cenizas solubles en agua

El análisis de cenizas solubles en agua, es el contenido de cenizas totales disueltas en agua, en la determinación de este ensayo se realizó por duplicado dando como resultado un promedio de 5,25 % con una desviación estándar de 0,75. Para este parámetro no existe antecedentes por lo cual se registra como primera vez.^(27,28,29)

Figura 10. Porcentaje de cenizas solubles en agua

Cenizas insolubles en ácido clorhídrico

En el análisis de cenizas insolubles en ácido clorhídrico se determina la cantidad de sílice, este ensayo se realizó por duplicado dando un porcentaje de 14,3 %.^(30,31,32) Estos resultados se presentan por primera vez.

Figura 11. Porcentaje de cenizas insolubles en HCl

Humedad

Figura 12. Porcentaje de humedad

En este ensayo se determinó la pérdida de peso por desecación, este análisis se realizó por duplicado dando como promedio 8 % y una desviación estándar de 1.^(33,34,35) No existe antecedentes de este parámetro, por ende, el resultado se presenta por primera vez.

Sustancias solubles

En la figura 13 se muestran los resultados obtenidos de las sustancias solubles realizadas en extracto acuoso, etéreo y alcohólico de las hojas de Amaranthus dubius, donde se obtuvo un porcentaje de etéreo de 2,2 % comparándolo con la investigación de un estudio donde sus resultados reflejan que tiene un porcentaje de 1,28 ± 0,85 lo cual indica porcentajes cercanos mientras que el extracto acuoso y el alcohólico no existen antecedentes, por lo tanto, el resultado se presenta por primera vez.^(36,37,38)

Figura 13. Porcentaje de las sustancias solubles

Tamizaje fitoquímico

En la tabla 5 se presentan los resultados del tamizaje de fitoquímico realizado con los extractos etéreo, acuoso y alcohólico de las hojas pulverizadas de la planta de Amaranthus dubius.

Tabla 5. Resultados del tamizaje fitoquímico
Ensayos	Metabolitos	Extractos
		Etéreo	Alcohólico	Acuoso
Sudan	Compuestos grasos	+	N/A	N/A
Baljet	Cumarinas	-	-	N/A
Dragendorff	Alcaloides	-	+++	+
Liberman- Burchard	Triterpenos y/o Esteroides	+ Verde esmeralda	-	N/A
Resinas	Resina	N/A	-	N/A
Fehling	Azucares Reductores	N/A	+++	+++
Espuma	Saponinas	N/A	-	N/A
Cloruro Férrico	Fenólicos y/o Taninos	N/A	+ Verde oscuro	+ Azul oscuro
Borntrager	Quinonas	N/A	++	N/A
Shinoda	Flavonoides	N/A	+ Amarillo	+ Amarillo naranja
Antocianidinas	Antocianidina	N/A	-	N/A
Mucílagos	Estructuras Tipo Polisacáridos	N/A	N/A	-

Mediante el estudio Fitoquímico realizado a la hoja de Amaranthus dubius empleando la metodología de un estudio se denotó que en el extracto etéreo se encuentran compuestos grasos y triterpenos y/o esteroides más en el extracto alcohólico y acuoso se hallaron presentes metabolitos como alcaloides, azúcares reductores, fenólicos y/o taninos, flavonoides y quinonas, este último se identificó solamente en el extracto alcohólico.^(39,40)

Por otro lado, en la determinación foliar de Amaranthus caudatus que realiza Jessica Guapi en su tesis, se encontró similitudes en cuanto a los resultados de las especies a considerar, más se destaca el hecho de que no se halló presente alcaloides y quinonas en la tesis de referencia, sin embargo, en las hojas de Amaranthus dubius se presentó en el extracto acuoso una opalescencia (+) y precipitación en el extracto alcohólico mientras que en la identificación de quinonas se observó una coloración rosada (++) confirmando la presencia de una quinona.^(41,42,43)

Valor nutricional

El contenido de macronutrientes, micronutrientes y fibra seca se desarrolló empleando un análisis foliar, proporcionando los resultados detallados a continuación:

Tabla 6. Resultados del examen foliar básico
Contenido de nutrientes en hojas de Amaranthus dubius Mart
Macronutrientes	Concentración por cada gramo de muestra (% s.m.s)
Nitrógeno (N)	4,71 %
Fósforo (P)	0,13 %
Magnesio (Mg)	0,20 %
Potasio (K)	1,67 %
Calcio (Ca)	0,16 %
Azufre (S)	0,09 %
Micronutrientes	Concentración por cada gramo de muestra (mg/kg)
Hierro (Fe)	149,07 mg/kg
Zinc (Zn)	88,71 mg/kg
Cobre (Cu)	18,69 mg/kg
Manganeso (Mn)	147,28 mg/kg
Boro (B)	17,80 mg/kg
Sodio (Na)	84,15 mg/kg
Fibra	Concentración por cada gramo de muestra(%p/p)
Fibra cruda	16,94 %

La determinación de los diferentes analices descriptos en la tabla 6 dieron como resultado las siguientes aportaciones:

Macronutrientes: el contenido de nitrógeno fue estimado en 4,71 %, un valor esperado dado las características nutricionales de la planta, el porcentaje obtenido cumple el rango óptimo proporcionado por parte del laboratorio, además se realizó la comparación con los rangos descriptos en el manual de agronomía^(44,45) para el caso de la lechuga y la espinaca, evidenciando que cumple el contenido nutricional para usos alimenticios.^(46,47)

El contenido de fósforo, Magnesio, Potasio, Calcio y Azufre resultan con un valor inferior al esperado, pues no se encuentra dentro del rango de referencia otorgado por el laboratorio, más, sin embargo, se puede inferir que los factores externos a la planta hubiesen interferido en el contenido de estos macronutrientes.^(48,49)

Figura 14. Porcentaje de macronutrientes

Micronutrientes: en el caso del Hierro, Zinc, Cobre, Manganeso, Boro y Sodio se puede destacar que la hoja se encuentra enriquecida con la presencia de estos micronutrientes, pues cumple con sobremanera los rangos aceptados para la lechuga y espinaca.^(50,51)

Figura 15. Resultados de los micronutrientes

Figura 16. Porcentaje de Fibra cruda

Fibra: en el contenido de fibra cruda fue estimado en 16,94 %, en este caso no se proporcionó un rango de referencia por parte del laboratorio, pero, sin embargo, se realiza la comparación con el artículo de referencia,^(52,53) el mismo que indica un valor de 9,24 % se puede inferir que los factores externos a la planta hubiesen interferido en el contenido de fibra.^(54,55)

CONCLUSIONES

El herbario GUAY identificó con el número “149” la muestra vegetal y la clasificó como Amaranthus dubius Mart.

Se estableció mediante parámetros fisicoquímicos las propiedades de las hojas de Amaranthus dubius Mart. se estimaron: cenizas totales, cenizas insolubles en agua, cenizas insolubles en ácido clorhídrico, humedad, sustancias solubles en extracto acuoso, extracto etéreo, extracto alcohólico.

Se determinó mediante el tamizaje fitoquímico la composición química cualitativa en los extractos etéreo, alcohólico y acuoso de las hojas de Amaranthus dubius Mart. encontrando la presencia de metabolitos tales como: alcaloides, quinonas, flavonoides, compuestos grasos, Triterpenos y/o esteroides, azúcares reductores, fenólicos y/o taninos.

Se definió el valor nutricional de micronutrientes y proteínas contenido en las hojas de Amaranthus dubius Mart., evidenciando que las hojas de tienen potencial dentro del uso de la alimentación.

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FINANCIACIÓN

Ninguna.

CONFLICTO DE INTERÉS

Los autores declaran que no existe conflicto de intereses.

CONTRIBUCIÓN DE AUTORÍA

Conceptualización: Escobar Paredes Rebeca Lucrecia, Solís Monar Lissette Gabriela, Pilar Asunción Soledispa Cañarte.

Curación de datos: Escobar Paredes Rebeca Lucrecia, Solís Monar Lissette Gabriela, Pilar Asunción Soledispa Cañarte.

Análisis formal: Escobar Paredes Rebeca Lucrecia, Solís Monar Lissette Gabriela, Pilar Asunción Soledispa Cañarte.

Investigación: Escobar Paredes Rebeca Lucrecia, Solís Monar Lissette Gabriela, Pilar Asunción Soledispa Cañarte.

Metodología: Escobar Paredes Rebeca Lucrecia, Solís Monar Lissette Gabriela, Pilar Asunción Soledispa Cañarte.

Administración del proyecto: Escobar Paredes Rebeca Lucrecia, Solís Monar Lissette Gabriela, Pilar Asunción Soledispa Cañarte.

Recursos: Escobar Paredes Rebeca Lucrecia, Solís Monar Lissette Gabriela, Pilar Asunción Soledispa Cañarte.

Software: Escobar Paredes Rebeca Lucrecia, Solís Monar Lissette Gabriela, Pilar Asunción Soledispa Cañarte.

Supervisión: Escobar Paredes Rebeca Lucrecia, Solís Monar Lissette Gabriela, Pilar Asunción Soledispa Cañarte.

Validación: Escobar Paredes Rebeca Lucrecia, Solís Monar Lissette Gabriela, Pilar Asunción Soledispa Cañarte.

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Redacción – borrador original: Escobar Paredes Rebeca Lucrecia, Solís Monar Lissette Gabriela, Pilar Asunción Soledispa Cañarte.

Redacción – revisión y edición: Escobar Paredes Rebeca Lucrecia, Solís Monar Lissette Gabriela, Pilar Asunción Soledispa Cañarte.